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產品資料
干貨|細胞轉染技術大匯總
作者:默瑞 發布時間:2016-11-30 點擊次數:3029

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概念:概括地說,轉染是使用非病毒感染的手段人工引入核酸(DNA或RNA)進入細胞的過程。轉染的目的是產生重組蛋白,或特異性增強或抑制轉染細胞中的基因表達。


轉染的類型

根據導入的核酸存在于宿主細胞的時間長短,可以分為瞬轉和穩轉。根據轉染方式可以分為化學,生物,物理方法。


瞬轉:因為導入的核酸沒有整合到宿主細胞基因組,因此它只會短暫地存在于宿主細胞中,不會隨著細胞的分裂而進入到子代細胞中。然而,導入的遺傳物質的高拷貝數導致其在細胞內的蛋白質表達水平較高。根據所使用的載體的不同,瞬轉通??梢?至7天內進行基因檢測,但是瞬時轉染的細胞通常在轉染后24-96小時收獲。當使用超螺旋質粒DNA時,瞬時轉染的效果最好,推測是由于超螺旋質粒DNA能更有效地被細胞攝取。


穩轉:外源DNA整合到細胞基因組中或作為附加體質粒保留在細胞中。與瞬時轉染不同,穩定轉染允許外源DNA在轉染的細胞及其后代中的長期維持。然而,通常是將單拷貝或幾個拷貝的外源DNA整合到穩定轉染的細胞的基因組中,因此,其表達水平一般低于瞬時轉染的表達水平。


由于穩轉效率較低,因此選用有效地轉染策略和篩選方法很重要。其中比較可靠地篩選方法是在DNA載體中包含選擇性標記,然后在細胞轉染短暫性恢復后進行適當地選擇性加壓。盡管相對于超螺旋DNA,線性DNA被細胞攝取的效率較低,但其能最有效地整合到宿主基因組中。


目前,由于各種轉染試劑的發明,哺乳動物細胞的瞬時轉染已經用于生產具有適當折疊和翻譯后修飾的重組蛋白。但表達mg/L-g/L的重組蛋白主要依賴于穩定細胞系的產生。


瞬轉和穩轉的比較

瞬轉

穩轉

導入的DNA沒有整合到基因組中,而是保留在細胞核上

導入的DNA整合到基因組中

導入的遺傳物質不傳遞到子代; 遺傳改變只是暫時的

導入的遺傳物質能夠代代相傳;遺傳改變是永久的

不需要選擇性篩選

需要選擇性篩選出穩定轉染的細胞

DNA載體和RNA都可用于瞬時轉染

只有DNA載體可用于穩定轉染;RNA本身不能穩定地導入細胞中

導入的遺傳物質的高拷貝數導致高水平的蛋白質表達。

單拷貝數或低拷貝數的穩定整合的DNA導致較低水平的蛋白質表達。

通常在轉染后24-96小時內收獲細胞。

需要2-3周的時間篩選出穩定轉染的細胞克隆。

通常不適合使用具有誘導型啟動子的載體的研究。

適用于使用帶有誘導型啟動子的載體的研究。


轉染方式

細胞由帶負電荷的磷脂雙分子層構成,這對大分子物質來說是個不可透過的屏障,比如DNA和RNA的磷酸骨架,其也帶負電荷。為了使核酸穿過細胞膜,研究人員開發了多種技術,大致分為三類:化學方法---利用載體分子包被核酸使其呈現中性電荷或正電荷。生物方法---利用基因工程病毒轉染非病毒基因到細胞中。物理方法---在細胞膜表面產生一個瞬時的孔從而導入DNA。然而,沒有一種方法適用于所有的細胞和實驗,理想的方法應根據您的細胞類型和實驗需要進行選擇,理想的方法應具有高轉染效率,低細胞毒性和對正常生理學的影響最小,并且易于使用和可重復性等特點。


化學轉染方法

技術

優點

缺點

陽離子脂質體

  • 操作快速簡單

  • 結果可重復

  • 轉染效率高

  • 可轉染DNA,RNA和蛋白質

  • 適用于生產瞬時和穩定的蛋白質

  • 可用于體內轉染

  • 需進行條件優化(一些細胞系對陽離子脂質體較敏感)

  • 有些細胞系不容易轉染

  • 血清的存在干擾復合物的形成,導致低轉染效率

  • 培養基中血清的缺失會增加細胞毒性

磷酸鈣共沉淀

  • 便宜且容易獲得

  • 適用于生產瞬時和穩定的蛋白質

  • 轉染效率高(不限制細胞系)


  • 需要仔細制備試劑 – CaPO4溶液對pH,溫度和緩沖鹽濃度的變化敏感

  • 可重復性較差

  • 有細胞毒性,尤其對原代細胞

  • 不能采用RPMI培養基,由于其含高濃度的磷酸鹽

  • 不適用于動物體內轉染

葡聚糖

  • 操作簡單

  • 結果可重復

  • 便宜

  • 對某些細胞有化學毒性

  • 只限于瞬時轉染

  • 轉染效率低,尤其在原代細胞中

其他陽離子聚合物

  • 在血清中穩定,對溫度不敏感

  • 高轉染效率(限制細胞系)

  • 結果可重復

  • 對某些細胞有毒性

  • 不能生物降解(樹枝狀大分子)

  • 只限于瞬時轉染


生物轉染方法

病毒轉染

  • 高轉染效率(對原代細胞有80-90%)

  • 適用于較難轉染的細胞系

  • 可用于體內轉染

  • 可用于構建穩定表達或瞬時表達的細胞系

  • 被轉染的細胞系必須含有病毒受體

  • 基因插入大小受限(病毒載體~10 kb,非病毒載體~100 kb)

  • 技術難度高,且構建重組蛋白很費時

  • 存在生物安全問題(激活潛在疾病,免疫原性反應,細胞毒性,插入突變,使細胞惡性轉化)

物理轉染方法

電轉

  • 原理簡單

  • 條件優化后可產生重復性的結果

  • 不需要載體

  • 不限制細胞類型和條件

  • 條件優化后可以快速轉染大量細胞

  • 需要特殊的設備

  • 需要優化電轉脈沖和電壓參數

  • 對細胞傷害很大

  • 細胞死亡率很高因此需要大量細胞

  • 會不可逆轉地損壞細胞膜,溶解細胞

生物傳遞粒子傳遞(粒子轟擊)

  • 不限制細胞類型和條件

  • 可用于動物體內轉染

  • 方法直接,結果可靠

  • 不限制導入基因的大小和數量

  • 主要用于基因疫苗和農業應用

  • 需要昂貴的設備

  • 會對樣品產生物理損傷

  • 細胞死亡率很高因此需要大量細胞

  • 需要準備微粒

  • 轉染效率相對較低

  • 對于研究應用成本較昂貴

顯微注射

  • 不限制細胞類型和條件

  • 可以單細胞轉染

  • 方法直接,結果可靠

  • 不限制導入基因的大小和數量

  • 不需要載體

  • 需要昂貴的設備

  • 有技術要求,且是勞動密集型(一次只能轉染一個細胞)

  • 常引起細胞死亡

激光介導的轉染(光轉染)

  • 可用于轉染DNA,RNA,蛋白質,離子,葡聚糖,小分子和半導體納米晶體

  • 可用于非常小的細胞

  • 允許單細胞轉染或同時轉染大量細胞

  • 不需要載體

  • 轉染效率高

  • 適用于多種細胞系

  • 需要昂貴的激光顯微鏡系統

  • 需要貼壁細胞

  • 有技術要求


陽離子脂質體介導的轉染


原理:陽離子脂質體介導的轉染是目前最常用的轉染方式之一。陽離子脂質的基本結構由帶正電荷的頭基和一個或兩個烴鏈組成,帶正電荷的頭基與帶負電荷的核酸通過靜電作用形成復合物,經細胞的內吞作用進入細胞。LifeTechnologies?提供了廣泛的陽離子脂質介導的轉染試劑,用于有效地將DNA,RNA,siRNA或寡核苷酸引入廣泛的細胞類型,包括Lipofectamine?3000試劑。當選擇轉染試劑時,您必須考慮您希望導入(DNA,RNA或蛋白質)的有效載荷以及要轉染的細胞類型,因為轉染試劑的選擇強烈影響轉染結果。



實驗步驟:將DNA,RNA,siRNA或寡核苷酸和轉染試劑分別在不同的管中稀釋→將兩者混合形成混合物→將形成的混合物加入細胞中,脂質體的正電荷有助于幫助復合物粘附到細胞膜上→復合物經細胞內吞作用進入細胞→檢測基因表達或沉默情況。


磷酸鈣共沉淀


原理:將DNA與氯化鈣在磷酸緩沖鹽水中混合形成磷酸鈣-DNA沉淀物,然后將其分散在培養的細胞上,磷酸鈣促進共沉淀物中的縮合DNA與細胞表面的結合,DNA通過內吞作用進入細胞。

實驗步驟:將氯化鈣和DNA混合,以可控的方式加入磷酸緩沖液?!谑覝叵路跤?,以形成極細,可溶的共沉淀微?!鷮⒘姿徕}-DNA沉淀物加入細胞中,后者能黏附到細胞膜表面→共沉淀物經細胞內吞作用進入細胞→檢測基因表達或沉默情況。


病毒轉染

原理:對于用脂質體不能實現轉染的細胞,可以采用病毒轉染。腺病毒,逆轉錄病毒和慢病毒載體已廣泛用于哺乳動物細胞體內外的基因轉染。

11.jpg

實驗步驟:通過基因克隆方法獲得重組病毒表達載體→轉染包裝細胞系,擴增并分離得到重組病毒顆?!兓⒌味ú《疽骸D導目的細胞(含有病毒特異性的受體)→從培養基中移除病毒→檢測基因表達或沉默情況。


電轉

原理:利用電脈沖在細胞膜上形成暫時的孔使核酸物質能穿過孔進入細胞。



實驗步驟:利用電轉緩沖液重懸細胞→對含有核酸,緩沖液,細胞的混合物給予合適的電脈沖→電脈沖在細胞膜上形成電勢差,誘導產生暫時的孔使核酸進入細胞→將細胞返回到生長培養基中,使其慢慢恢復→檢測基因表達或沉默情況。


版權所有:默瑞(上海)生物科技有限公司   

技術支持:易動力網絡

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